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机构

  • 3篇华中科技大学
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作者

  • 4篇林菊生
  • 4篇何星星
  • 4篇谢琼慧
  • 4篇蒋翔
  • 3篇常莹
  • 2篇王梦漪
  • 1篇宋起龙
  • 1篇刘庆
  • 1篇陈曼

传媒

  • 2篇中华肝脏病杂...
  • 2篇华中科技大学...

年份

  • 4篇2011
4 条 记 录,以下是 1-4
排序方式:
乙型肝炎病毒X蛋白对HepG2细胞羧末端结合蛋白反应蛋白表达的影响
2011年
目的研究乙型肝炎病毒X蛋白(HBx)对博莱霉素诱导HepG2细胞DNA双链断裂(DSB)损伤修复关键因子羧末端结合蛋白反应蛋白(CtIP)的影响。方法建立稳定表达HBx的HepG2肝癌细胞株(HepG2-HBx)及空质粒对照细胞株(HepG2-vec)。用博莱霉素诱导细胞DSB损伤后,用流式细胞仪检测细胞周期和细胞凋亡情况,用实时定量PCR及Western blot检测CtIP的mRNA与蛋白表达水平,并用激光共聚焦显微镜观察CtIP蛋白在细胞内的定位情况。多组数据采用单因素方差分析和SNK—q检验;两组数据间比较用t检验。结果经检测转染HBx基因的HepG2细胞(HepG2-HBx)能稳定表达HBx。博莱霉素处理后,HepG2-HBx细胞与HepG2-vec细胞的凋亡比例分别为16.90%±0.89%和15.30%±0.86%,差异无统计学意义(q=2.074,P〉0.05),但死亡细胞比例分别为8.71%±0.74%和4.90%±0.46%,差异有统计学意义(q=7.126,P〈0.01);同时两种细胞株都出现了细胞周期G2/M期阻滞,差异有统计学意义(F=11.401,P〈0.05)。HBx使CtIP蛋白表达水平和mRNA表达水平均下调,HeDG2-HBx细胞与HepG2-vec细胞CtIP蛋白的相对表达量分别为0.66±0.04、0.73±0.05,差异有统计学意义(t=2.314,P〈0.05);CtIP mRNA相对表达量分别为1.00±0.06、1.23±0.08,差异有统计学意义(t=2.732,P〈0.05)。同时观察到CtIP蛋白主要在细胞胞核内表达。结论HBx能干扰肿瘤抑制蛋白CtIP的表达,可能影响细胞DSB损伤的修复。
刘庆王梦漪何星星陈曼宋起龙蒋翔谢琼慧林菊生
关键词:肝细胞乙型肝炎病毒X蛋白DNA双链断裂
乙型肝炎病毒X基因下调miR-192对人肝癌细胞株HepG2凋亡的影响被引量:6
2011年
目的探讨乙型肝炎病毒X基因(HBx)通过调节人肝癌细胞株HepG2中miR-192的表达而抑制其凋亡的机制。方法设立3个细胞组:稳定转染HBx基因的HepG2细胞(HepG2/HBx),稳定转染空载体pcDNA3.1的HepG2细胞(HepG2/pcDNA3.1)以及未作转染的HepG2细胞。用流式细胞术分析3个细胞组的凋亡率差异,用Taqman探针荧光定量PCR检测3组细胞中miR-192的表达水平。转染miR-192后,用流式细胞术检测HepG2细胞凋亡率的变化,同时用SYBRGreen荧光定量PCR和Westernblot检测细胞中p53、PUMA表达的变化。计量资料均数的比较用单因素方差分析。结果HepG2/HBx细胞的凋亡率为2.37%q-0.35%,较HepG2/pcDNA3.1、HepG2细胞(11.46%±0.69%、12.50%±0.66%)明显降低(F=171.722,P〈0.01)。miR-192表达在HepG2/HBx细胞中为49.1%±5.9%,较HelK;2/pcDNA3.1、HepG2细胞(98.0%±8.9%,100%)也明显下调(F=14.319,P〈0.05)。转染miR-192后HepG2细胞的凋亡率(15.74%±1.17%)较转染相应阴性对照的HepG2细胞的凋亡率(10.74%士1.15%)显著升高(F=18.415,P〈0.05),同时,p53、PUMA基因在mRNA(p53:1.68±0.12比0.90±0.09,F=43.115,尸〈0.05;PUMA:1.66±0.10比0.98±0.06,F=22.541,P〈0.05)和蛋白质水平(p53:3.07比1,PUMA:2.13比1)的表达均显著上升。结论miR-192促进HepG2细胞凋亡,HBx通过下调miR-192抑制HepG2细胞凋亡。
谢琼慧何星星常莹蒋翔林菊生
关键词:乙型基因
HBx基因下调miR-192对人肝癌细胞株HepG2周期的影响被引量:7
2011年
目的探讨HBx基因通过调节miR-192的表达影响人肝癌细胞株HepG2周期进展的机制。方法流式细胞仪分析以下3组细胞的周期变化:HepG2/HBx细胞(HepG2细胞稳定转染HBx基因)、HepG2/pcDNA3.1细胞(HepG2细胞稳定转染空载体pcDNA3.1)以及HepG2细胞。3组细胞中miR-192的表达采用Taqman探针荧光定量PCR法检测。流式细胞术观察转染miR-192后HepG2细胞的周期分布变化,SYBR Green荧光定量PCR和Westernblot分别检测miR-192对HepG2细胞p53、CDKN1A mRNA和蛋白表达的影响。结果 3组细胞中,HepG2/HBx细胞G0/G1期细胞比例明显降低[(52.78±4.08)%vs(67.37±4.87)%,(65.08±5.15)%],S期和G2/M期比例明显升高[S期:(25.22±1.84)%vs(19.78±1.26)%,(18.84±1.68)%;G2/M期:(22.00±2.07)%vs(12.85±1.29)%,(16.08±1.44)%]。HepG2/HBx细胞miR-192表达显著下调[(49.1±5.9)%vs(98.0±8.9)%,(100.0±9.1)%]。转染miR-192引起HepG2细胞G0/G1期和G2/M期阻滞,同时p53、CDKN1A mRNA(p53:1.68±0.12 vs 0.90±0.06;CD-KN1A:2.36±0.12 vs 1.05±0.06)和蛋白(p53:3.07倍;CDKN1A:2.82倍)的表达水平亦显著上升。结论 miR-192通过促进p53和CDKN1A表达引起HepG2细胞周期阻滞,而HBx通过下调miR-192加速HepG2细胞周期进程。
谢琼慧何星星常莹蒋翔林菊生
关键词:HBX基因HEPG2细胞细胞周期
miR-192负性调控人肝癌细胞株HepG2中RB1基因的表达被引量:2
2011年
目的探讨miR-192对人肝癌细胞株HepG2中RB1基因表达的调节作用。方法运用生物信息学方法对miR-192进行靶基因预测并分析其潜在靶基因RB1;将含有miR-192结合位点的RB1mRNA 3′端非编码区(3′UTR)片段和在miR-192结合位点进行突变的RB1 3′UTR突变片段克隆至报告基因载体pMIR-Report luciferase vector,重组质粒分别命名为pMIR-RB1和pMIR-RB1-mut;将重组质粒、Beta-gal内参质粒和microRNA共转染HepG2细胞,双荧光素酶报告基因系统检测各实验组中细胞荧光素酶的表达;SYBR Green荧光定量PCR和Western blot分别在mRNA和蛋白水平检测miR-192对内源性RB1表达的调节作用。结果生物信息学分析筛选出89个miR-192的潜在靶基因,RB1基因是其中之一;测序验证重组质粒pMIR-RB1和pMIR-RB1-mut构建成功;过表达miR-192时,共转染pMIR-RB1质粒的细胞相对荧光素酶活性(4.80±0.36)较相应过表达miR-NC组(7.90±0.91)明显降低(P<0.05),而共转染pMIR-Luc或pMIR-RB1-mut质粒的细胞相对荧光素酶活性[pMIR-Luc:(7.68±1.04);pMIR-RB1-mut:(7.56±0.99)]较相应过表达miR-NC组[pMIR-Luc:(7.86±0.73);pMIR-RB1-mut:(7.82±1.05)]无显著差异;上调miR-192水平显著降低HepG2细胞中内源性RB1mRNA[(0.56±0.10)vs(1.05±0.13)]和蛋白(47%vs 100%)的表达。结论 RB1基因是miR-192的一个靶基因,在HepG2细胞中,miR-192通过直接结合RB1mRNA 3′UTR而负性调控RB1基因表达。
谢琼慧王梦漪谢卫国何星星常莹蒋翔阮琼芳林菊生
关键词:RB1基因HEPG2细胞基因表达
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